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Desde que surgiu, a tecnologia de reação em cadeia da polimerase (PCR) tornou-se uma ferramenta indispensável na biologia molecular. Kits de teste desenvolvidos com base no princípio da PCR, com suas características de alta sensibilidade, alta especificidade e rápida e eficiente, são amplamente usados em várias áreas como diagnóstico de doenças, teste de patógenos, tipificação genética e monitoramento de segurança alimentar. Este artigo analisa em profundidade o funcionamento do kit de teste de PCR, os componentes principais e os processos operacionais padrão para fornecer uma referência profissional para uma compreensão completa dessa tecnologia-chave.
Princípio de funcionamento do kit de teste PCR
1.1 Resumo dos princípios básicos
A PCR é uma técnica de amplificação seletiva de fragmentos específicos de DNA in vitro, cujo princípio básico é baseado na replicação de semi-retenção de DNA. Os kits permitem a detecção de amostras de ácidos nucleicos em pequenas quantidades, fornecendo um sistema de reação otimizado que permite que a sequência de DNA alvo se amplifique exponencialmente em horas (teoricamente, n ciclos podem produzir uma amplificação de 2 ^ n vezes).
1.2 Mecanismo de reação central
Deformação: Em condições de alta temperatura (geralmente 94-95 ° C), o DNA de dupla cadeia é desencadeado em cadeia única, como modelo de amplificação.
Refrigeração: a temperatura da reação é reduzida para a temperatura de ligação específica do pregador (geralmente 50-65 ° C), onde o pregador superior e inferior se ligam às sequências complementares do DNA do modelo, respectivamente.
Extensão: a nova cadeia de DNA é sintetizada ao longo do modelo, usando dNTPs como matéria-prima, a uma temperatura apropriada para a DNA polimerase (normalmente 72 ° C).
Essas três etapas formam um ciclo que geralmente é repetido 30-40 vezes para obter um produto de DNA suficiente para o teste.
1.3 Análise dos componentes principais do kit
ADN polimerase: geralmente a Taq enzima resistente ao calor ou sua enzima modificada, que garante a sua atividade durante o ciclo de altas temperaturas.
Primário: O oligonucleótido específico projetado para a sequência alvo, determinando a especificidade de amplificação.
Desoxinucleótido trifosfórico (dNTPs): matérias-primas essenciais para a síntese de DNA, incluindo dATP, dTTP, dCTP e dGTP.
Sistema de tampão: fornece o pH, a concentração de íons e o estabilizante adequados para otimizar a atividade enzimática.
Íons magnésio: como cofactor essencial para a DNA polimerase, a concentração afeta diretamente a especificidade e eficiência da reação.
Sistemas de sondas (kits qPCR): tais como sondas TaqMan, sinais moleculares, etc., para detecção de fluorescência em tempo real.
Etapas de operação padrão do kit de teste de PCR
2.1 Preparação do experimento
Tratamento da amostra:
- Escolha o método adequado de extração de ácido nucleico de acordo com o tipo de amostra (sangue, tecido, tampão, etc.)
- Obtenha ácido nucleico de alta qualidade usando kits de extração complementares ou métodos de extração universais
Determinação da concentração e pureza dos ácidos nucleicos (a relação A260/A280 deve estar entre 1,8 e 2,0)
Preparação e distribuição de reagentes:
- Descongele cada componente do kit e misture suavemente
- Preparação de pré-mistura por quantidade de reação para reduzir erros operacionais
- Operação no gelo para manter a atividade enzimática
Prevenção da poluição:
- Criação de divisões independentes: área de preparação de reagentes, área de processamento de amostras, área de análise amplificada
- Usar o filtro para evitar a poluição por aerossóis
Limpeza regular de mesas e instrumentos
2.2 Construção do sistema de reação
Por exemplo, um sistema de reação comum de 25 μL:
| Composição | Volume (μL) | Concentração final / dose |
| 2× pré-mistura de PCR | 12,5 | 1× |
| Introdução positiva (10 μM) | 0,5-1,0 | 0,2-0,4 μM |
| Introdução inversa (10 μM) | 0,5-1,0 | 0,2-0,4 μM |
| 探针 (10 μM, qPCR) 用) | 0.5-1.0 | 0.2-0.4 μM |
| DNA modelo | 2-5 | 1-100 ng |
| Água desionizada estéril | Adicionar até 25 | - |
Notas de preparação:
1. Finalmente, adicione o DNA do modelo para evitar a poluição
2. Misture suavemente para evitar a formação de bolhas
3. Coleta de gotas centrífugas temporárias
2.3 Configuração do amplificador de PCR
Procedimento regular de três etapas:
1. Predeterminabilidade: 95 ℃, 2-5 minutos (garantir a deformação completa)
Ampliação do ciclo (35-40 ciclos):
Deformação: 95°C, 15-30 segundos
- Cozimento: 50-65 ° C, 15-30 segundos (otimizado de acordo com o valor Tm do precursor)
- Extensão: 72 ° C, 15-60 segundos / kb (ajustado de acordo com o comprimento do produto)
Extensão final: 72 ° C, 5-10 minutos
4. Conservação: Manter a 4 ° C ou 12 ° C
Procedimento rápido de duas etapas (alguns kits são aplicáveis):
Combine a cozimento e a extensão em um passo (geralmente 60-65 ° C) para reduzir o tempo de ciclo.
Gradiente PCR:
No experimento inicial, o gradiente pode ser definido na temperatura de cozimento (por exemplo, 55-65 ° C) para determinar a temperatura máxima de cozimento jia.
2.4 Análise dos resultados
Método final PCR:
- Eletroforese em gel de againe: julgamento pela posição da faixa e brilho
- Eletroforese capilar: maior resolução e capacidade quantitativa
PCR quantitativa por fluorescência em tempo real (qPCR):
- Análise da curva de amplificação: quantificação do número de ciclos limiar (valor Ct)
- Análise da curva de fusão: verificação da especificidade do produto
PCR digital (dPCR):
Quantificação absoluta, sem curva padrão, alta sensibilidade.
Os principais fatores de impacto e estratégias de otimização
3.1 Otimização do design de introdutores
Comprimento: normalmente de 18 a 25 nucleótidos
Conteúdo de GC: 40-60%
Valor de Tm: a diferença entre os animais não excede 2°C
- Evitar estruturas secundárias e dímeros primários
3.2 Otimização das condições de reação
Concentração de íons magnésio: geralmente otimizada na faixa de 1,5-3,0 mM
Temperatura de cozimento: ajustar o teste de 2-3 ° C de acordo com o valor Tm do precursor
Número de ciclos: Evite excessivos ciclos que levem a amplificações não específicas
3.3 Configurações de controle
Controle positivo: confirmar o funcionamento normal do sistema de resposta
Controle negativo:
Controle sem modelo (NTC): monitoramento da contaminação dos reagentes
- Controle sem precursor: excluir a auto-amplificação do modelo
Controle de amostra negativa: confirmação da especificidade do teste
Perguntas e soluções frequentes
Problemas | Possíveis causas | Soluções |
| Produto sem amplificação | Degradação do modelo, design inadequado do primer, condições de resposta inadequadas | Verificar a qualidade do modelo, redesenhar o primer, otimizar as condições de resposta |
| Faixas não específicas | Temperatura de cozimento muito baixa, má especificidade do precursor, concentração excessiva de íons de magnésio | Aumentar a temperatura de cozimento, redesenhar o precursor, reduzir a concentração de íons de magnésio |
| Diómero de precursor | Concentração excessiva de precursor, complementaridade de 3' | Redução da concentração de precursor, redesenho de precursor |
| Eficiência de amplificação baixa | Inibidor do modelo, atividade do reagente reduzida, condições de reação ruins | Purificação do modelo, substituição de reagentes frescos, otimização do sistema de reação |
Áreas de aplicação e tendências
5.1 Principais áreas de aplicação
- Diagnóstico clínico: teste de patógenos, exame de doenças genéticas, teste de marcadores tumorais
Segurança alimentar: bactérias patogênicas de origem alimentar, ingredientes geneticamente modificados, testes de alérgenos
- Medicina Forense: Análise de impressões digitais de DNA, identificação de paternidade
- Biotecnologia agrícola: identificação de variedades, testes de modificação genética
- Aplicações científicas: análise de expressão genética, validação de clonagem, detecção de mutações
5.2 Tendências tecnológicas
PCR múltipla: detecção simultânea de vários alvos para aumentar o fluxo
PCR rápida: otimiza enzimas e sistemas de reação para reduzir o tempo de detecção
PCR digital: quantificação absoluta para maior precisão de detecção
PCR portátil: detecção rápida em campo para substâncias e campo
Reagentes estabilizadores a temperatura ambiente: sem necessidade de transporte de cadeia de frio, ampliando o escopo de aplicações
Recomendações de compra e uso
6.1 Pontos importantes da seleção do kit
1. Aplicação de correspondência: escolha de acordo com o objetivo de teste e tipo de amostra
Sensibilidade e especificidade: acessar dados de validação de desempenho
Facilidade de operação: a forma de pré-mistura pode simplificar a operação
Compatibilidade: Compatibilidade com instrumentos existentes no laboratório
Suporte técnico: serviços técnicos e treinamento fornecidos pelo fornecedor
6.2 Precauções de uso
1. Siga estritamente as instruções do kit, não mude o sistema arbitrariamente
2. Diferentes lotes de reagentes para evitar misturas
Calibrar o instrumento regularmente para garantir a precisão dos dados
Estabelecer procedimentos operacionais padrão de laboratório (SOP)
Participar na avaliação da qualidade da sala para garantir a qualidade do teste
A ciência dos seus princípios e a padronização do seu funcionamento determinam a confiabilidade dos resultados do teste. À medida que a tecnologia avança e as aplicações se expandem, os kits de PCR estão evoluindo em direção a maior sensibilidade, maior fluxo e maior rapidez e conveniência. A compreensão do seu funcionamento, o domínio dos processos operacionais padrão e a atenção aos principais fatores de influência são a base para obter resultados de teste precisos e confiáveis. Seja para diagnóstico clínico, pesquisa científica ou monitoramento de qualidade, é essencial regular o uso de kits de teste PCR.
No futuro, com a fusão de novas tecnologias como expansão isotérmica e chips de microfluido, a tecnologia de detecção de ácidos nucleicos será mais diversificada, mas a tecnologia de PCR continuará a ser fundamental e importante por um longo período de tempo. Otimizações tecnológicas contínuas e inovações em aplicações aumentarão o valor do teste de PCR na saúde humana, biossegurança e pesquisa científica.