Para determinar se o anticorpo está desativado, o núcleo depende se ele se liga eficazmente ao antígeno ou desempenha um papel neutralizador. O método comumente usado é o teste de neutralização e o teste ELISA, uma função de teste direto, uma capacidade de combinação quantitativa.

Ensaio de neutralização: medição da atividade funcional

Teste de neutralização do vírus: mistura de anticorpos e vírus após a infecção das células, se a taxa de sobrevivência celular é alta, indica que os anticorpos neutralizaram o vírus e a atividade é normal.

Teste de neutralização de toxinas: por exemplo, teste anti-O, anticorpos e toxinas misturadas após a adição de glóbulos vermelhos, se os glóbulos vermelhos não se dissolverem, indica que os anticorpos neutralizaram as toxinas, a atividade não tem problemas.

Teste ELISA: capacidade de ligação quantitativa

Princípio: os anticorpos são adsorvidos no veículo de fase sólida, após a adição de anticorpos a serem testados, o grau de coloração e a quantidade de anticorpos estão relacionados com a coloração secundária através da marcação enzimática.

Passos:

A embalagem do antígeno é: fixar o antígeno na placa microporosa.

Adicionar anticorpos a testar: ligação ao antígeno.

Adicionar o marcador enzimático: ligação a anticorpos.

Reação de coloração: substrato, o grau de coloração reflete a quantidade de anticorpos.

Análise dos resultados: medir o valor de absorção de luz, comparando com a curva padrão, para avaliar a eficácia e a atividade dos anticorpos.

Outros métodos auxiliares

Imunohistoquímica (IHC): observar a combinação de anticorpos e antígenos teciduais para avaliar a especificidade.

Teste de reatividade cruzada: verificar se os anticorpos se ligam a antígenos não alvo para evitar falsos positivos.

IV. Atenção

Condições experimentais: temperatura, pH, etc. devem ser rigorosamente controlados para evitar afetar os resultados.

Conservação de anticorpos: Evite o congelamento repetido para evitar a perda de atividade.